2026-03-06
Na pesquisa em ciências biológicas, nos experimentos de farmacologia e toxicologia e no diagnóstico patológico, osala de dissecação de animais e amostragem de tecidosserve como ponte crítica entre a experimentação in vivo e a análise de dados downstream. Os padrões de projeto deste espaço, o rigor dos procedimentos operacionais e a eficácia dos controles de biossegurança determinam diretamente a integridade das amostras experimentais e a confiabilidade dos dados da pesquisa.
Este artigo analisa as principais considerações técnicas dos modernos laboratórios de dissecação e amostragem de animais a partir de três perspectivas:configuração da instalação, procedimentos operacionais padronizados e controle de biossegurança.
I. Configuração Funcional Central de uma Sala de Dissecção e Amostragem
Uma sala profissional de dissecção e amostragem de animais deve apoiar todo o fluxo de trabalho – desde a eutanásia e exposição de órgãos até a fixação de tecidos e eliminação de resíduos. De acordo com os padrões atuais de construção de laboratórios, as configurações principais incluem os dois aspectos a seguir:
1. Infraestrutura e plataformas de trabalho
Os procedimentos de dissecção devem ser realizados emmesas de dissecção dedicadas ou mesas de necropsia ventiladas com pressão negativa. Para animais de laboratório pequenos e médios (como ratos e coelhos),mesas de necropsia ventiladas com pressão negativatornaram-se a configuração padrão.
Esses sistemas usamunidades de exaustão de pressão negativa e tratamento de gasespara remover eficazmente gases orgânicos e odores, comoformaldeído e metil mercaptanogerado durante a dissecção, protegendo os operadores da exposição a aerossóis nocivos.
A superfície de trabalho também deve estar equipada com:
Interface de exaustão de gases anestésicos
Sistema de iluminação localizada
Bandeja de esterilização de instrumentos
2. Equipamento de amostragem e eliminação de resíduos
Preparação do Instrumento
Os instrumentos de dissecção comuns incluem:
Placa de fixação de animais
Tesouras cirúrgicas de diferentes tamanhos (tesouras oftálmicas, tesouras de tecido)
Lâminas cirúrgicas
Pinças dentadas e não dentadas
Pinça hemostática
Cortadores de ossos
Régua de medição e balança eletrônica para medição de órgãos
Gestão de Resíduos
De acordo com oRegulamentos de Biossegurança para Animais de Laboratório, a área de dissecção deve estar equipada com:
Sacos amarelos para resíduos de risco biológicopara carcaças e órgãos de animais
Recipientes para objetos cortantespara agulhas e lâminas usadas
Esses materiaisnunca deve ser misturado com lixo doméstico normal.
II. Procedimentos padronizados de dissecção e amostragem de tecidos
Para melhorar a reprodutibilidade experimental e minimizar artefatos causados pelo manuseio inadequado, a dissecção e a amostragem de tecidos devem seguir protocolos técnicos rigorosos.
1. Preparação pré-operatória e manejo animal
A anestesia animal ou a eutanásia devem ser concluídas rapidamente para evitar respostas prolongadas ao estresse. O estresse excessivo pode alterar a atividade enzimática nos tecidos, levando potencialmente aautólise, o que pode afetar a precisão doobservações de microscopia óptica ou microscopia eletrônica.
Exame Externo
Antes da dissecção, a superfície corporal do animal deve ser examinada sistematicamente, incluindo:
Aberturas naturais (boca, nariz, ânus) para secreções anormais
Condição e brilho do cabelo
Presença de trauma, inchaço ou lesões
Estas observações reflectem muitas vezes acondição fisiológica ou patológica anterior à morte.
2. Exposição de tecidos e observação de órgãos
Abordagem de dissecação
Os animais são normalmente fixados noposição supina, e as cavidades abdominal e torácica são abertas ao longo doincisão na linha média.
As seguintes observações devem ser registradas:
Presença de líquido, sangue ou aderências nas cavidades
Tamanho, cor e textura dos órgãos
Lesões ou anormalidades visíveis
Documentação da Lesão
Para animais modelo com características patológicas específicas (tais como tumores ou áreas necróticas), as lesões devem ser descritas objetivamente, incluindo:
Localização
Forma
Cor
Tamanho (com precisão de milímetros)
Relação com os tecidos circundantes
3. Especificações Técnicas para Amostragem de Tecidos
Os procedimentos corretos de amostragem são essenciais para a qualidade da amostra. Os seguintes princípios técnicos devem ser seguidos:
Controle de velocidade e temperatura
Após a remoção, os tecidos devem serimediatamente imerso em fixador pré-resfriado (geralmente 4°C).
A exposição prolongada à temperatura ambiente pode levar à liberação de enzimas hidrolíticas intracelulares, que podem danificar a ultraestrutura celular.
Quando necessário, operações de corte poderão ser realizadas embolsas de gelo ou bandejas geladas.
Requisitos de tamanho de amostra
Amostras de microscopia eletrônica:geralmente não é maior que1mm³devido à lenta penetração dos fixadores.
Seções de parafina de rotina:a espessura do tecido deve ser3–5mm, com um tamanho recomendado de1,5 cm x 1,5 cm.
Padrões de uso de instrumentos
O corte deve ser realizado comlâminas afiadas.
Puxar, serrar ou comprimir com instrumentos rombos deve ser evitado para evitar danos mecânicos.
Ao segurar o tecido,uma pinça não dentada deve agarrar o tecido conjuntivo circundante em vez do próprio tecido alvopara evitar a deformação celular.
III. Locais de amostragem padrão para órgãos-chave
Para garantircomparabilidade entre experimentos, os locais de amostragem dos mesmos órgãos devem permanecer consistentes. De acordo com diretrizes laboratoriais emitidas por instituições comoRWD Ciências da Vida e Meifengli, as práticas de amostragem padrão incluem:
Cérebro:seções transversais doprosencéfalo (lobo frontal), mesencéfalo (lobo parietal) e cerebelo. Pontos de amostragem específicos são necessários para observação do hipocampo.
Coração:incisão longitudinal doaurícula até o ápicepara expor o átrio direito, válvulas atrioventriculares, ventrículo direito e parede ventricular esquerda.
Fígado:selecione ambos osmaior lobo (por exemplo, lobo esquerdo)emenor lobo (por exemplo, lobo caudado). O tecido deve ser amostrado5 mm da borda, incluindo cápsula e parênquima.
Rim:
Rim esquerdo: corte transversal através do hilo para expor a pelve, o córtex e a medula.
Rim direito: corte longitudinal incluindo o hilo.
Trato digestivo:
Estômago: amostra ao longo domaior curvatura da cárdia ao piloro.
Intestino: seções deduodeno, jejuno (incluindo placas de Peyer), íleo e cólon. O conteúdo deve ser removido e os tecidos alisados em papel filtro antes da fixação para evitar enrolamento.
4. Biossegurança e Gestão de Resíduos
Para dissecções envolvendomicroorganismos altamente patogênicos(por exemplo, modelos de primatas não humanos infectados), os procedimentos devem ser conduzidos emlaboratórios de biossegurança de alto nível.
De acordo com oDiretrizes Técnicas de Biossegurança para Dissecção Animal, deverão ser implementadas as seguintes medidas de controlo:
1. Proteção Pessoal
Os operadores devem usar:
N95 ou respiradores de nível superior
Protetores faciais
Luvas duplas
Batas de isolamento impermeáveis
Estas medidas de proteção ajudam a prevenir infecções causadas porrespingos de fluidos corporais ou exposição a aerossóis.
2. Controle Ambiental
As dissecções devem ser realizadas emambiente de pressão negativa, onde o fluxo de ar passaSistemas de filtragem HEPA antes da descarga.
3. Descarte de carcaça
Após experimentos:
Carcaças de animais e materiais contaminados devem serautoclavadoou armazenado emcongeladores designados para resíduos médicos de baixa temperatura.
A disposição final deve ser realizada poragências licenciadas de tratamento de resíduos médicos por meio de incineração.
V. Seleção e Aplicação de Fixadores
A fixação é oetapa crítica após amostragem de tecido, visando estabilizar as estruturas celulares e prevenir a degradação e decomposição enzimática.
Diferentes propósitos de pesquisa requerem diferentes fixadores:
| Tipo de fixador | Características principais | Aplicações Típicas |
|---|---|---|
| 10% de formalina tamponada neutra | Penetração forte, morfologia estável a longo prazo | Patologia de rotina (coloração H&E), imuno-histoquímica |
| 4% de paraformaldeído (PFA) | Preserva a antigenicidade | Imunocitoquímica, marcação por fluorescência |
| Glutaraldeído | Fixação rápida, preserva a atividade enzimática e os microtúbulos | Estudos de ultraestrutura por microscopia eletrônica |
| Tetróxido de Ósmio | Fixa lipídios e fornece coloração de elétrons | Pós-fixação para microscopia eletrônica |
Notas importantes
O volume do fixador deve ser10–50 vezes o volume do tecido.
O tempo de fixação típico varia de24–72 horas.
Para órgãos que contêm ar (como os pulmões),fixador deve ser injetado para inflar o tecido, garantindo total contato com a solução.
Conclusão
Umsala de dissecação de animais e amostragem de tecidosnão é apenas um espaço cirúrgico físico, mas uma plataforma técnica abrangente que integracontrole de biossegurança, procedimentos operacionais padronizados (SOPs) e preparação precisa de amostras.
A adesão estrita aos protocolos de amostragem, o uso deequipamento profissional de dissecção com pressão negativa, e a conformidade com os regulamentos de biossegurança são essenciais para:
Garantir a precisão e reprodutibilidade dos dados científicos
Melhorar a gestão da biossegurança laboratorial
Melhorar a qualidade geral da pesquisa experimental.